Resumen

La elaboración de materiales caseros para colecta, sacrificio y preservación de artrópodos es fundamental para estudiarlos en cualquier ámbito de importancia dentro de las actividades antropogénicas. Los materiales elaborados en el laboratorio entomológico de Tumbaco-CADET son caseros y cada uno tiene una funcionalidad específica estos son: para colecta red entomológica y bucoaspirador se usa dependiendo el tamaño y el lugar donde se encuentre el insecto, para sacrificar los artrópodos colectados se utiliza la cámara letal y para manipularlos se debe colocar antes en la cámara húmeda que ablandece todos los apéndices del artrópodo evitando que con la manipulación se dañe su estructura natural. La construcción de estos fue exitosa y cada grupo de estudiantes tiene la disponibilidad de estos materiales para realizar trabajos de interés.

Palabras claves: Red entomológica. Bucoaspirador. Cámara de rehidratación. Cámara letal

Abstract

The development of home-made materials for the collection, sacrifice and preservation of arthropods is essential to study them in any area of ​​importance within anthropogenic activities. The materials elaborated in the entomological laboratory of Tumbaco-CADET are homemade and each one has a specific functionality, these are: for collecting entomological net and orofax, it is used depending on the size and the place where the insect is found, to sacrifice the collected arthropods it is used The lethal chamber and to manipulate them, it must first be placed in the humid chamber that softens all the arthropod appendages, preventing its natural structure from being damaged by manipulation. The construction of these was successful and each group of students has the availability of these materials to carry out work of interest.

Key words: Entomological network. Bucoaspirator. Rehydration chamber. Lethal chamber

Introducción

El estudio de artrópodos es de importancia en las actividades antropogénicas debido al papel que cumplan ya sean benéficos o perjudiciales dependiendo la actividad y ámbito que se desarrollen. Para el estudio pertinente es necesario observarlos lo más cerca posible, es por ello que la actividad de colecta, sacrificio y montaje nos ayuda a una observación directa que nos permitirá ver cada detalle con la facilidad de manipularnos para conocerlos a fondo.

Los insectos tienen capacidad de adaptarse a diferentes hábitats por la cual los patrones de comportamiento son variados lo que conllevan a la necesidad de establecer diferentes técnicas de colecta para el estudio de estos organismos (Gasca & Higuera 2010). Según Márquez (2005) la colecta directa en plantas es apoyada frecuentemente por una red de golpeo, red entomológica o jama, en la cual caen insectos que están sujetos a las plantas, ya que muchos de ellos tienen la conducta de dejarse caer cuando se encuentran en peligro o se encuentran volando sobre la planta. Se procede a golpear la vegetación arbustiva en varias plantas (o las plantas bajo estudio) por periodos cortos de tiempo y se revisa la red, los insectos pequeños y de cuerpo blando pueden ser colectados con el aspirador (succionando) y luego depositarlos (soplando) en un frasco colector. Para el sacrificio de los organismos colectados se utiliza la cámara letal que con los vapores matan al insecto, o lo adormece si el tiempo de exposición es corto. La utilización posterior de la cámara húmeda nos ayuda con la manipulación de los apéndices de los artrópodos ya que lo ablandece y así mantenerlos con su forma natural, (Lorea 2004).

La fabricación de materiales caseros para colectar artrópodos nos da facilidad de trabajo en campo que nos ayudará en determinado estudio. Conocer el proceso de construcción artesanal para captura de insectos voladores, sacrificio de artrópodos en general y la fabricación de la cámara húmeda que nos ayudará en la recuperen la flexibilidad de sus apéndices para facilitar el montaje de los mismos. Así al tener disponibilidad abierta de estos materiales nos ayudan a trabajar en el tiempo que consideremos apto.

Materiales y métodos

Los materiales caseros a excepción de la cámara letal que ya poseía el laboratorio se realizaron en el CADET- Tumbaco en el laboratorio de entomología con los materiales de cada grupo. Materiales para la red entomológica: palo de escoba, 1,50 m de alambre de 5 a 6 mm de espesor, 1m de tela tul, marcador permanente 1m de alambre delgado o cuerda, cinta métrica, tijera, estilete, alicate, aguja e hilo blanco. En la elaboración de la red entomológica o jama se realizan dos canales de 9cm en un extremo en el otro extremo de 7cm con pequeños orificios al final de cada canal, tomar el alambre de 5 a 6 mm de espesor, medir 10 cm en la parte inicial realizar una circunferencia con diámetro de 40cm y en la parte terminal medir 8cm para hacer un doblez hacia dentro de las dos puntas con ayuda del alicate, colocar en los canales del palo de escoba y sujetarlos con alambre más delgado. La segunda parte consiste en medir toda la circunferencia que se formó para medir lo mismo en el largo de la tela tul y de alto medir 80cm y cortar, luego señalar en la parte superior 10 cm, doblar la tela en dos partes que forma un cuadro donde se debe señalar la parte central para dibujar una “V” que al desdoblar forma una “W”, consecutivamente recortar y cocer con hilo blanco la tela que tendrá forma de “V”, finalmente colocar sobre el aro el sobrante de 10 cm doblar y cocer.

Los materiales para la elaboración del bucoaspirador: 1 m de manguera transparente de aproximadamente 0,7 cm de diámetro, estilete, pistola de silicona, punta de micropipeta y un trozo de tela tul. Para la realización se debe cortar la manguera 80 cm en una de las puntas colocar por dentro tela tul con silicón para que se mantenga sujeto y poner la punta de micropipeta.

Materiales de elaboración cámara de rehidratación: envase “tape ware” de 20cm de ancho x 35cm de largo y de alto 6cm o más, algodón o gasa, papel toalla, ácido acético (vinagre), malla, arena pomina y tijera. La cámara de rehidratación consiste en conseguir un envase tape ware que tenga tapa hermética ya que nos ayudará a mantener los flujos de aire dentro. Dentro de este envase se coloca 2cm de arena pomina lavada verter ácido acético, colocar la malla que debe estar cortada dependiendo el área del envase y sobre este colocar papel toalla.

El laboratorio posee cámaras letales que tienen como fin el sacrificio de insectos se observó que está elaborado en un frasco de vidrio transparente de boca ancha con tapa por dentro tiene 3 cm de aserrín, 1 cm de yeso odontológico con hoyos formados por varilla de vidrio durante el proceso de endurecimiento del yeso para poder verter el líquido letal y este atraviese hasta la capa de aserrín.

Resultados y Discusión

Red entomológica

La red entomológica que realizamos en el laboratorio con la tela tul, un palo de escoba y un alambre, es una herramienta muy útil para cuando se quiere recolectar muestras de insectos en movimiento o que se nos dificulta atrapar con algún otro instrumento. Pusimos a prueba la red, y como se lo esperaba, atrapamos muchos artrópodos, con las debidas indicaciones que nos habían impartido, lo que es pasar de un lado al otra, por cinco veces y luego girar la boca de la red con el fin de que no se escapen los insectos que se atrapó, luego con el mayor se los cuidados, introducimos la mano dentro de la red con una funda o un frasco hasta poder estudiarlos

El buco aspirador

Lo realizamos con ayuda de una micropipeta, con 70 cm de manguera y de 0,7 cm de diámetro, esto ya que necesitamos colocar la punta de la manguera con la punta de la micropipeta y absorber con el busco aspirador a los insectos, esto nos tocó hacer con mucho cuidado, ya que si el orificio no es angosto o es con un diámetro demasiado grande. El busco aspirador es empleado para atrapar insectos de tamaños muy pequeños, como pulgones, pulgas, chinches (Iza, Vásquez, & Altamira, 2011).

Cámara húmeda

La utilización de una cámara húmeda casera es realizada con la finalidad de preservar a los insectos en un estado de reposo, para luego ser manipulados a la finalidad de que se quiera tener, ya sea para colocarlos en una caja entomológica o simplemente llevarla al microscopio y poder observar su morfología.

Cuando se trata de conservar insectos que son muy delicados con las partes del insecto, se coloca una capa de papel toalla para que esté no esté en contacto directamente con el vinagre. Cabe decir que este instrumento para conservar a los insectos, deben pasar ahí no más de 24 horas ya que si el insecto cuenta con escamas en sus alas, estás tienden a desprenderse (Rodríguez & Pérez, 2006).

Cámara letal

Este instrumento tiene la finalidad de matar a los insectos con la aplicación de formol, un químico que es letal hasta para nosotros los seres humanos, pero de igual manera en el frasco que será utilizado, la cantidad de este químico es en mínimas cantidades, por cuestiones de salud y prevención de cualquier accidente

Conclusiones

Es necesario conocer diversas técnicas de colecta y preservación de los artrópodos debido a sus variados hábitos y diferentes ciclos de vida, por ello la realización de nuestros propios materiales caseros nos ayuda a mejorar las técnicas de colecta obteniendo mejores resultados en campo al momento de seleccionar los artrópodos de interés. Un solo método o técnica de colecta no es suficiente para el estudio de las poblaciones ya que no todos se ubican en las partes bajas de las plantas y son de menor tamaño para utilizar el bucoaspirador, o no todos se encuentran volando para atraparlos con la red entomológica, por ello es necesario conocer la forma de vida de los artrópodos y utilizar la mejor herramienta posible. Para realizar un estudio de su estructura es necesario sacrificarlos para lo cual necesitamos someterlos a temperaturas bajas o colocarlos en la cámara letal dependiendo del tiempo disponible, pero necesitamos poder manipularlos sin alterar o dañar las estructuras para lo cual la cámara de rehidratación hará que el artrópodo muerto vuelva a su tener flexibilidad permitiéndonos manejar sus apéndices y observar de mejor manera ya sea a simple vista o con la ayuda de un estereomicroscopio.

Cuestionario

1.-

a. Escriba la principal característica de una cámara letal.

La base de cualquier estudio entomológico es la identificación o determinación de la especie a la que pertenece el insecto en cuestión, por eso la técnica de sacrificio con la cámara letal es usada a fin de no deteriorar coloraciones o estructuras, externas o internas, que puedan ser importantes para lograr la identificación precisa y este se demore menor tiempo que con otras formas de sacrificio, (Márquez 2005).

b. ¿Qué sustancias químicas se pueden utilizar en la cámara letal para el sacrificio de artrópodos?

Cuando se utilizan trampas con cebos, normalmente éstas cuentan con alcohol etílico al 70% como líquido conservador, el cual mata a los organismos (se puede utilizar alcohol etílico entre el 70% y el 80 %, es menos común el uso de alcohol etílico al 95%, que se recomienda para preservar insectos acuáticos) (Steyskal et al., 1986; Contreras-Ramos, 1999).

Los insectos con alas delicadas, del tipo de alas membranosas y escamosas, son sacrificados utilizando cianuro de potasio, acetato de etilo, éter o cloroformo como sustancias tóxicas que provocan la asfixia rápida en los insectos (Dennis, 1979).

c. ¿Qué precauciones se tendrá al utilizar una cámara letal?

Al usar líquidos fácilmente volátiles es prioritario el buen manejo de los vapores tóxicos que se forman en la cámara letal durante el tiempo que se sacrifica el artrópodo por la cual no se debe abrir la tapa en dirección al rostro para no inhalar estos peligrosos vapores y evitar síntomas y daños por intoxicación.

d. ¿Qué órdenes de insectos se deben recolectar con la “jama” o malla de captura?

La red entomológica también llamada red lepidopterológica o jama es una herramienta diseñada para capturar insectos adultos voladores (Lepidópteros) (Márquez, 2005).

e. Realice un breve resumen sobre cómo se debe realizar la captura en campo de los insectos con la “jama”.

Con la red entomológica hacer movimientos de vaivén por encima del suelo para atrapar insectos en vuelo. Una vez que se haya atrapado algún cerrar rápidamente la parte superior de la red con la mano, y dependiendo del insecto, colocarlo dentro del frasco.

2.-

a. Escriba la diferencia entre cámara húmeda y cámara letal.

La cámara letal tiene líquidos volátiles que es usada para la muerte de los insectos posterior de su recolección, priorizando la conservación de los individuos recolectados.

La cámara húmeda es usada después de la muerte del insecto, es usada para el ablandamiento del cuerpo del insecto para poder observar y distinguir las características de cada individuo.

b. ¿Cuáles son las ventajas y desventajas de elaborar una cámara húmeda?

La mayor ventaja de realizar la cámara de humedad es que el insecto al ser sometido a la humedad nos ayuda a que no este tan duro al momento de manipular y que sus apéndices se mantengan de forma natural.

Una de las desventajas es no calcular de manera precisa la cantidad de agua que debemos colocar en la arena y esto provoque que tenga contacto directo con las muestras y se dañen.

c. ¿Cuál es la función del ácido acético (vinagre) en la cámara húmeda?

Para evitar la formación de mohos hay que agregar una cucharada de vinagre (Ácido acético) sobre la arena que esta humedecida con agua (Márquez, 2005).

d. Consulte los tiempos referenciales que requiere la rehidratación de insectos pequeños a grandes, con ejemplos.

Según Andrade, Henao & Triviño (2013) se debe dejar durante 24 a 48 horas máximo el ejemplar para que se hidrate, hasta que adquiera la soltura suficiente, como si estuviese recién recolectado, Dismorphiine butterflies (Lepidoptera: Pieridae). Mientras que Lorea (2004) indica que se debe dejar actuar durante un tiempo no menor de 36 horas para asegurar el resultado con cualquier insecto, ya que el excesivo tiempo de permanencia es perjudicial.

e. ¿Qué otra alternativa existe para evitar el desarrollo de hongos en los insectos en rehidratación?

El acetato de etilo repele eficientemente a los derméstidos (escarabajos pequeños cuyas larvas se comen por dentro a los insectos de las colecciones) y posiblemente también a los hongos; además los mantiene blandos y listos para el montaje, (Borror et al., 1989).

Bibliografía

Andrade, G., Henao, E., & Triviño, P. 2013. Técnicas y procesamiento para la recolección, preservación y montaje de Mariposas en estudios de biodiversidad y conservación. (Lepidoptera: Hesperioidea – Papilionoidea). Revista Acad. Colomb. Cienc. 37 (144): 311-325.

Borror, D. J., C. A. Triplehorn & N. F. Johnson 1989. An introduction to the study of insects. Saunders College Publishing, Philadelphia.

Contreras-Ramos, A. 1999. Métodos para estudios en sistemática de Megaloptera (Insecta: Neuropterida) con base en morfología. Dugesiana, 6(1): 1-15.

Dennis, C. J. 1974. Laboratory manual for introductory entomology. W. C. Brown Company Publishers, Dubuque, Iowa.

Gasca, A, & Higuera, D. 2010. Protocolos y métodos de colecta para el estudio de artrópodos de dosel en bosques de niebla del Neotrópico. Revista Colombiana Ciencia Anim (Colombia), 2(2): 1-14.

Iza, J., Vásquez, A., & Altamira, N. (2011). Métodos y Materiales para la Recolección de Artrópodos. Revista Chapingo, 2(1), 10-14.

Marquez, J. 2005. Técnicas de colecta y preservación de insectos. Boletín Sociedad Entomológica Aragonesa, (37) : 385 – 408.

Rodríguez, M., & Pérez, A. (2006). Técnicas y Procesamiento para la Recolección de Insectos. Revista Ingoagronomia, 3(2), 12-15.

Steyskal, G. C., W. L. Murphy & E. M. Hoover (Eds.) 1986. Insects and mites: Techniques for collection and preservation. U. S. Deparment of Agricultura, Miscellaneous Publication No. 1443.

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